| 植物名 | ショウガ |
| ラテン名 | Zingiber officinale Roscoe |
| 文献コード | Zingiber_officinale-Ref-4 |
| 出典（著者，雑誌，巻号頁，発行年） | Rout G.R., et al., In Vitro Cell. Dev. Biol.-Plant 37: 814-819 (2001) |
| 要約（和訳） | 26.6 µM 6-benzylaminopurine (BA)、8.57 µM indole-3-acetic acid (IAA)、1111.1 µM adenine sulfate及び3% (w/v) sucrose含有Murashige and Skoog (MS)
basal mediumでの茎頂培養により、ショウガ栽培種V3S18のシュート増殖を行なった。4.44 µM BA、5.71 µM IAA及び 3-8% (w/v) sucrose含有MS培地での8週間の培養により、培養シュートより培養根茎が形成した。培養条件（明期、炭水化物の種類、栄養成分及び植物成長調節物質）を変化させ、培養根茎の収量が最大となる条件を調べた。試験した種々明期の中では、24時間明期が他の明期よりも培養根茎形成に効果的であった。試験した炭素源の中では、ショ糖が最も培養根茎形成に効果的であった。培養根茎は、混合土に定植後2週間以内に出芽した。出芽した植物体は、圃場条件でも生存し、正常に生育した。 |
| 目的 | 植物組織培養での効率的ショウガ増殖法と培養根茎形成法の確立 |
| 材料（品種，系統，産地，由来） | the High Altitude Research Station of Orissa University of
Agriculture and Technology, Pattangi, Orissa, Indiaより収集したショウガ（Zingiber officinale cv. V3S18）の根茎 |
| 外植片 | 滅菌し湿潤させた砂土中で出芽させたショウガ根茎 |
| 初期培養 | 青白い出芽した芽を集め、2%洗剤`Teepol'
(Qualigen, India)で15分間洗浄し、引き続き 0.2% (w/v)塩化水銀水溶液で25分間表面殺菌後、滅菌水で数回濯いだ。解剖用顕微鏡下で頂芽を切り取った。葉原基1又は2枚の茎頂（0.1-0.5 mm）を切り取り、外植片とした。シュート増殖のため、MS (Murashige and Skoog)培地に種々のサイトカイニン、例えば、6-benzylaminopurine
(BA: 0.0、2.22、4.44、6.66、8.88、13.3、17.77、22.2及び26.6 µM)、kinetin (Kn: 0.0、2.32、4.64、6.96、9.28、11.6、13.9、18.56、23.2及び27.9 µM)、adenine sulfate (Ads: 370.4、740.7、1111.1,及び1481.5 µM)、オーキシン例えば
indole-3-acetic acid (IAA: 0.0、2.85、5.71、8.57及び11.42 µM)、
indole-3-butyric acid (IBA: 0.0、2.46、4.92、7.38及び9.84 µM)及び1-
naphthaleneacetic acid (NAA: 0.0、2.68、5.37、8.05及び10.7 µM)を添加した。培地のpHはオートクレーブ前に5.8に調整した。各処理区25培養物、3反復とした。培養25±2℃、16時間明期（蛍光管、55 µE m-2s-1）とした。
植物成長調節物質無添加培地では、茎頂の成長も増殖も認められなかった。培養4週間後、最大のシュート増殖（32.4）は、26.6 µM BA、8.57 µM IAA及び1111.1 µM adenine sulfate添加培地で得られた。 |
| シュート増殖 | 初期培養物より3-4 cm高のシュートを分割し、種々濃度のBA (0.0, 2.22, 4.44, 6.7, 8.9, 13.3,及び17.8 µM) 、KN (0.0, 2.32, 4.64, 6.96, 9.28, 11.6及び 18.6 µM)、IAA (0.0, 2.85, 5.71及び8.57 µM)、NAA (0.0, 2.68, 5.37及び8.05 µM)、3% (w/v) sucrose含有MS半固形培地、16時間明期（55 µE m-2s-1、 蛍光管）、25±2℃で培養した。高い培養根茎形成率は、4.44 µM BA、5.71 µM IAA、3% sucrose含有MS培地で認められた。
2番目の実験では、MS培地に4.44 µM BA、5.71 µM IAAと種々炭水化物（sucrose、maltose、glucose及びfructose）を添加し、培養根茎形成を調べた。使用した炭水化物のうち、根茎形成にはsucroseがd-glucose、maltose及びfructoseに比べて有効であった。
3番目の実験では、MS培地に4.44 µM BA、5.71 µM IAAと種々濃度のsucrose (1、2、3、4、5、6、7、8、9及び10%)(w/v)を添加し、培養根茎形成の最適化を試みた。 その結果、6-8%sucroseの根茎形成率が最大となった。
4番目の実験では、明期の長さ（0h、8h、16 h、24 h：蛍光管：55 µE m-2s-1、25±2℃）が培養根茎形成に及ぼす影響を調べた。その結果、24時間明期で培養根茎形成数が最大となった。 |
| 発根 | |
| 馴化条件 | 培養した幼植物から根茎を集めて滅菌水で洗浄し、土-砂-牛糞（1:1:1）を混合した土を入れた陶器鉢に植えた。陶器鉢は、根茎からの出芽及び生育のため、温室で維持した。潅水は2日毎に行なった。種々処理で得られた根茎を混合土に植えた。
最大の出芽は、4.44 µM BA、5.71 µM IAA,、8% sucrose添加、 24時間明期、8週間の培養で得られた根茎で認められた。出芽したシュートは、正常な形態で健全に生育した。8時間又は16時間明期で得られた根茎は、出芽が遅れた。 |
| 鉢上げ・定植 | |
| 栽培条件 | |
| 再生植物体の形質 | |
| 分析した成分 | |
| 成分の抽出法 | |
| 分析法 | |
| 備考 | |